2.43
1.65
1.98
0.73
1.88
1.81
2.43
2.2 Bağıl moleküler kütle dağılımının kalibrasyon eğrisinde kullanılan standart maddeler: insülin, mikopeptitler, glisin-glisin-tirozin-arginin, glisin-glisin-glisin
3. Alet ve ekipman
23.2
21.4
22.2
16.1
22.3
20.8
23.9
27.5
Genel olarak, Sustar ürünlerindeki amino asit oranı Zinpro ürünlerindekinden daha yüksektir.
Bölüm 8 Kullanımın etkileri
Farklı eser mineral kaynaklarının, yumurtlama döneminin sonlarında olan yumurtlayan tavukların üretim performansı ve yumurta kalitesi üzerindeki etkileri
Üretim Süreci
Hedefli şelasyon teknolojisi
Kesme emülsifikasyon teknolojisi
Basınçlı püskürtme ve kurutma teknolojisi
Soğutma ve nem alma teknolojisi
Gelişmiş çevre kontrol teknolojisi
Ek A: Peptitlerin bağıl moleküler kütle dağılımının belirlenmesine yönelik yöntemler
Kabul edilen standart: GB/T 22492-2008
1. Test Prensibi:
Yüksek performanslı jel filtrasyon kromatografisi ile belirlenmiştir. Yani, durağan faz olarak gözenekli dolgu maddesi kullanılarak, ayırma için örnek bileşenlerinin bağıl moleküler kütle boyutlarındaki farka dayanarak, 220 nm ultraviyole absorbsiyon dalga boyundaki peptit bağında tespit edilen, jel filtrasyon kromatografisi ile bağıl moleküler kütle dağılımının belirlenmesi için özel veri işleme yazılımı (yani GPC yazılımı) kullanılarak, kromatogramlar ve verileri işlenerek, soya peptitinin bağıl moleküler kütle boyutu ve dağılım aralığı hesaplanmıştır.
2. Reaktifler
Deneyde kullanılan suyun GB/T6682 standardındaki ikincil su özelliklerine uygun olması ve özel durumlar dışında kullanılan reaktiflerin analitik saflıkta olması gerekmektedir.
2.1 Reaktifler arasında asetonitril (kromatografik olarak saf), trifloroasetik asit (kromatografik olarak saf) bulunur.
2.2 Bağıl moleküler kütle dağılımının kalibrasyon eğrisinde kullanılan standart maddeler: insülin, mikopeptitler, glisin-glisin-tirozin-arginin, glisin-glisin-glisin
3. Alet ve ekipman
3.1 Yüksek Performanslı Sıvı Kromatografisi (HPLC): UV dedektörü ve GPC veri işleme yazılımına sahip bir kromatografik iş istasyonu veya entegratör.
3.2 Mobil faz vakum filtrasyon ve gaz giderme ünitesi.
3.3 Elektronik terazi: 0.000 1g hassasiyetinde.
4 İşlem adımı
4.1 Kromatografik koşullar ve sistem adaptasyon deneyleri (referans koşullar)
- 4.1.1 Kromatografik kolon: TSKgelG2000swxl300 mm×7,8 mm (iç çap) veya protein ve peptitlerin belirlenmesi için uygun, benzer performansa sahip aynı tipte diğer jel kolonlar.
- 4.1.2 Hareketli faz: Asetonitril + su + trifloroasetik asit = 20 + 80 + 0.1.
- 4.1.3 Algılama dalga boyu: 220 nm.
- 4.1.4 Akış hızı: 0,5 mL/dak.
- 4.1.5 Algılama süresi: 30 dk.
- 4.1.6 Numune enjeksiyon hacmi: 20 μL.
- 4.1.7 Kolon sıcaklığı: oda sıcaklığı.
- 4.1.8 Kromatografik sistemin tespit gereksinimlerini karşılaması için, yukarıdaki kromatografik koşullar altında, jel kromatografik kolon verimliliğinin, yani teorik plaka sayısının (N), tripeptit standardının (Glisin-Glisin-Glisin) piklerine göre hesaplanarak 10000'den az olmaması şart koşulmuştur.
- 4.2 Bağıl moleküler kütle standart eğrilerinin oluşturulması
- Yukarıda belirtilen farklı bağıl moleküler kütleli peptit standart çözeltileri, 1 mg/mL kütle konsantrasyonunda, hareketli faz eşleştirme yöntemiyle hazırlanmış, belirli bir oranda karıştırılmış ve daha sonra 0,2 μm~0,5 μm gözenek boyutuna sahip organik faz membranından süzülerek numuneye enjekte edilmiş ve ardından standartların kromatogramları elde edilmiştir. Bağıl moleküler kütle kalibrasyon eğrileri ve denklemleri, bağıl moleküler kütlenin logaritmasının tutma süresine karşı grafiğe dökülmesi veya doğrusal regresyon yoluyla elde edilmiştir.
4.3 Numune işleme
10 mL'lik bir hacimsel şişeye 10 mg numuneyi hassas bir şekilde tartın, az miktarda hareketli faz ekleyin, numunenin tamamen çözünmesi ve karışması için 10 dakika ultrasonik çalkalama yapın, hareketli faz ile ölçeğe kadar seyreltin ve ardından 0,2 μm~0,5 μm gözenek boyutuna sahip bir organik faz membranından süzün ve süzüntü A.4.1'deki kromatografik koşullara göre analiz edin.
- 5. Bağıl moleküler kütle dağılımının hesaplanması
- 4.3'te hazırlanan örnek çözeltinin 4.1'deki kromatografik koşullar altında analiz edilmesinden sonra, örneğin kromatografik verilerinin GPC veri işleme yazılımı ile 4.2 kalibrasyon eğrisine yerleştirilmesiyle örneğin bağıl moleküler kütlesi ve dağılım aralığı elde edilebilir. Farklı peptitlerin bağıl moleküler kütlelerinin dağılımı, tepe alanı normalizasyon yöntemiyle şu formüle göre hesaplanabilir: X=A/A toplam×100
- Formülde: X - Numunedeki toplam peptit içindeki belirli bir moleküler kütleli peptidin kütle oranı, %;
- A - Bağıl moleküler kütleli bir peptidin tepe alanı;
- Toplam A - her bir bağıl moleküler kütleli peptidin tepe alanlarının toplamı, bir ondalık basamağa kadar hesaplanmıştır.
- 6 Tekrarlanabilirlik
- Tekrarlanabilirlik koşulları altında elde edilen iki bağımsız belirleme arasındaki mutlak fark, iki belirlemenin aritmetik ortalamasının %15'ini geçmemelidir.
- Ek B: Serbest Amino Asitlerin Belirlenmesi Yöntemleri
- Standartın benimsenmesi: Q/320205 KAVN05-2016
- 1.2 Reaktifler ve malzemeler
- Buzlu asetik asit: analitik olarak saf
- Perklorik asit: 0,0500 mol/L
- Gösterge: %0,1 kristal viyole göstergesi (buzlu asetik asit)
- 2. Serbest amino asitlerin belirlenmesi
Numuneler 80°C'de 1 saat süreyle kurutuldu.
Numuneyi kuru bir kaba koyarak oda sıcaklığına kadar doğal olarak soğumasını veya kullanılabilir bir sıcaklığa kadar soğumasını bekleyin.Yaklaşık 0,1 g (0,001 g hassasiyetinde) numuneyi 250 mL'lik kuru konik bir balona tartın.Numunenin ortamdaki nemi emmesini önlemek için hızlıca bir sonraki adıma geçin.25 ml buzlu asetik asit ekleyin ve en fazla 5 dakika iyice karıştırın.İki damla kristal viyole indikatörü ekleyin.Çözelti mor renkten bitiş noktasına dönene kadar 0,0500 mol/L (±0,001) standart perklorik asit titrasyon çözeltisi ile titrasyon yapın.
Tüketilen standart çözeltinin hacmini kaydedin.
- Boş testi de aynı anda gerçekleştirin.
- 3. Hesaplama ve sonuçlar
- Reaktifteki serbest amino asit içeriği X, kütle oranı (%) olarak ifade edilir ve şu formüle göre hesaplanır: X = C × (V1-V0) × 0,1445/M × 100%, formülde:
- C - Standart perklorik asit çözeltisinin konsantrasyonu, mol/litre (mol/L) cinsinden.
- V1 - Numunelerin standart perklorik asit çözeltisi ile titrasyonu için kullanılan hacim, mililitre (mL) cinsinden.
- Vo - Standart perklorik asit çözeltisi ile titrasyon boşluğu için kullanılan hacim, mililitre (mL) cinsinden;
M - Numunenin kütlesi, gram (g) cinsinden.
| 0,1445: 1,00 mL standart perklorik asit çözeltisine eşdeğer amino asitlerin ortalama kütlesi [c (HClO4) = 1,000 mol / L]. | 4.2.3 Seryum sülfat standart titrasyon çözeltisi: konsantrasyon c [Ce (SO4) 2] = 0,1 mol/L, GB/T601 standardına göre hazırlanmıştır. | |
| Standartların benimsenmesi: Q/70920556 71-2024 | 1. Belirleme prensibi (Örnek olarak Fe) | Amino asit demir komplekslerinin susuz etanolde çözünürlüğü çok düşüktür, serbest metal iyonları ise susuz etanolde çözünür; bu nedenle, amino asit demir komplekslerinin şelasyon oranını belirlemek için susuz etanoldeki çözünürlükleri arasındaki fark kullanılmıştır. |
| Formülde: V1 - test çözeltisinin titrasyonu için tüketilen serium sülfat standart çözeltisinin hacmi, mL; | Susuz etanol; geri kalanı GB/T 27983-2011'in 4.5.2 maddesiyle aynıdır. | 3. Analiz Aşamaları |
| İki deneyi paralel olarak yapın. 103±2℃'de 1 saat kurutulmuş numuneden 0,1 g'ı 0,0001 g hassasiyetle tartın, çözmek için 100 mL susuz etanol ekleyin, süzün, süzülmüş kalıntıyı en az üç kez 100 mL susuz etanol ile yıkayın, ardından kalıntıyı 250 mL'lik konik bir şişeye aktarın, GB/T27983-2011'in 4.5.3 maddesine göre 10 mL sülfürik asit çözeltisi ekleyin ve ardından GB/T27983-2011'in 4.5.3 maddesindeki "Isıtarak çözündürün ve ardından soğumaya bırakın" adımlarına göre aşağıdaki işlemleri gerçekleştirin. Boş numune testini aynı anda gerçekleştirin. | 4. Toplam demir içeriğinin belirlenmesi | 4.1 Belirleme ilkesi, GB/T 21996-2008'deki 4.4.1 maddesiyle aynıdır. |
4.2. Reaktifler ve Çözümler
| 4.2.1 Karışık asit: 700 ml suya 150 ml sülfürik asit ve 150 ml fosforik asit ekleyin ve iyice karıştırın. | 4.2.2 Sodyum difenilamin sülfonat indikatör çözeltisi: 5 g/L, GB/T603 standardına göre hazırlanmıştır. | 4.2.3 Seryum sülfat standart titrasyon çözeltisi: konsantrasyon c [Ce (SO4) 2] = 0,1 mol/L, GB/T601 standardına göre hazırlanmıştır. | |
| 4.3 Analiz Adımları | İki deneyi paralel olarak yapın. 0,1 g numuneyi 0,20001 g hassasiyetle tartın, 250 mL'lik konik bir şişeye koyun, 10 mL karışık asit ekleyin, çözündükten sonra 30 mL su ve 4 damla sodyum dianilinin sülfonat indikatör çözeltisi ekleyin ve ardından GB/T21996-2008'in 4.4.2 maddesine göre aşağıdaki adımları uygulayın. Boş numune testini de aynı anda gerçekleştirin. | 4.4 Sonuçların Gösterimi | Amino asit demir komplekslerinin toplam demir içeriği X1, demirin kütle oranı cinsinden, % olarak ifade edilen değer, formül (1)'e göre hesaplandı: |
| X1=(V-V0)×C×M×10-3×100 | V0 - Boş çözeltinin titrasyonu için tüketilen serium sülfat standart çözeltisi, mL; | V0 - Boş çözeltinin titrasyonu için tüketilen serium sülfat standart çözeltisi, mL; | C - Seryum sülfat standart çözeltisinin gerçek konsantrasyonu, mol/L5. Şelatlardaki demir içeriğinin hesaplanmasıŞelattaki demir içeriği X2, demirin kütle oranı cinsinden, % olarak ifade edilen değer, şu formüle göre hesaplanmıştır: x2 = ((V1-V2) × C × 0.05585)/m1 × 100 |
| Formülde: V1 - test çözeltisinin titrasyonu için tüketilen serium sülfat standart çözeltisinin hacmi, mL; | V2 - Boş çözeltinin titrasyonu için tüketilen serium sülfat standart çözeltisi, mL;nom1 - Numunenin kütlesi, g. Paralel belirleme sonuçlarının aritmetik ortalaması belirleme sonucu olarak alınır ve paralel belirleme sonuçlarının mutlak farkı %0,3'ten fazla olmaz. | 0,05585 - 1,00 mL serium sülfat standart çözeltisi C[Ce(SO4)2.4H20] = 1,000 mol/L'ye eşdeğer, gram cinsinden ifade edilen demir(II) iyonu kütlesi.nom1 - Numunenin kütlesi, g. Paralel belirleme sonuçlarının aritmetik ortalaması belirleme sonucu olarak alınır ve paralel belirleme sonuçlarının mutlak farkı %0,3'ten fazla olmaz. | 6. Şelasyon oranının hesaplanmasıŞelasyon oranı X3, yüzde olarak ifade edilen değer, X3 = X2/X1 × 100Ek C: Zinpro'nun şelatlama oranının belirlenmesine yönelik yöntemler |
Standart kabulü: Q/320205 KAVNO7-2016
1. Reaktifler ve malzemeler
a) Buzlu asetik asit: analitik saflıkta; b) Perklorik asit: 0,0500 mol/L; c) İndikatör: %0,1 kristal viyole indikatörü (buzlu asetik asit)
2. Serbest amino asitlerin belirlenmesi
2.1 Numuneler 80°C'de 1 saat süreyle kurutuldu.
2.2 Numuneyi kuru bir kaba koyarak oda sıcaklığına kadar doğal olarak soğumasını veya kullanılabilir bir sıcaklığa kadar soğumasını sağlayın.
2.3 Yaklaşık 0,1 g numuneyi (0,001 g'a kadar hassas olacak şekilde) 250 mL'lik kuru konik bir balona tartın.
2.4 Numunenin ortamdaki nemi emmesini önlemek için hızlıca bir sonraki adıma geçin.
2.5 25 ml buzlu asetik asit ekleyin ve en fazla 5 dakika iyice karıştırın.
2.6 İki damla kristal viyole indikatörü ekleyin.
2.7 Çözelti mor renkten yeşil renge 15 saniye boyunca renk değişimi olmadan dönene kadar 0,0500 mol/L (±0,001) standart perklorik asit titrasyon çözeltisi ile titrasyon yapın.
2.8 Tüketilen standart çözeltinin hacmini kaydedin.
2.9 Boş test işlemini aynı anda gerçekleştirin.
- 3. Hesaplama ve sonuçlar
- Katalanca
- Physicochemical parameters
V1 - Numunelerin standart perklorik asit çözeltisi ile titrasyonu için kullanılan hacim, mililitre (mL) cinsinden.
Vo - Standart perklorik asit çözeltisi ile titrasyon boşluğu için kullanılan hacim, mililitre (mL) cinsinden;
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
Adres: Çin, Siçuan Eyaleti, Chengdu Şehri, Pujiang İlçesi, Shouan Kasabası, Qingpu Yolu No. 147
Telefon: 86-18880477902
Ürünler
İnorganik eser mineraller
- Organik eser mineraller
- Svahili
- Özelleştirilmiş hizmet
- Hızlı bağlantılar
Şirket Profili
| Application object | Suggested dosage (g/t full-value material) | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| Gujarati | Bilgi almak için tıklayın. | © Telif Hakkı - 2010-2025 : Tüm Hakları Saklıdır. | Site Haritası EN ÇOK ARANANLAR Telefon |
| Tel | 86-18880477902 | Cava | E-posta |
| 8618880477902 | Çince | Fransızca | |
| Bird | Çince | Fransızca | Almanca İspanyol |
| Aquatic animals | Japonca | Korece | Arapça Yunan |
| Türkçe | İtalyan | ||
| Ruminant animal g/head day | January 0.75 | Endonezyalı Afrikaans İsveççe |
Lehçe
- Bask
- Katalanca
- Physicochemical parameters
Hintçe
Laos
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
Shona
Bulgarca
- Cebuano
- This product is chemically stable and can significantly reduce its damage to vitamins and fats, etc. The use of this product is conducive to improving feed quality;
- The product is absorbed through small peptide and amino acid pathways, reducing the competition and antagonism with other trace elements, and has the best bio-absorption and utilization rate;
- Hırvat
Flemenkçe
| Application object | Urdu Vietnam | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| Gujarati | Haitili | Hausa | Kinyarwanda Hmong Macarca |
| Piglets and fattening pigs | Igbo | Cava | Kannada Khmer Kürt |
| Kırgızca | Latince | ||
| Bird | 300～400 | 45～60 | Makedon Malay Malayalam |
| Aquatic animals | 200～300 | 30～45 | 1. Promote growth, improve feed conversion; 2. Improve anti-stress abolity, reduce morbidity and mortality. |
Norveççe
- Peştuca
- Appearance: brownish-yellow granules
- Physicochemical parameters
Sırpça
Sesotho
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
Shona
Sindhi
This product is an all-organic trace mineral chelated by a special chelating proces with pure plant enzymatic small molecule peptides as chelating substrates and trace elements;
Svahili
Tacik
Tamil
Telugu
Tayland
| Application object | Urdu Vietnam | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| Yidiş | Yoruba | Zulu | Kinyarwanda Oriya Türkmen |
| Uygur | 250～400 | 37.5～60 | 1. Improving the immunity of piglets, reducing diarrhea and mortality; 2. Improving palatability, increasing feed intake, increasing growth rate and improving feed conversion; 3. Make the pig coat bright and improve the carcass quality and meat quality. |
| Bird | 300～400 | 45～60 | 1. Improve feather glossiness; 2. improve the laying rate, fertilization rate and hatching rate of breeding eggs, and strengthen the coloring ability of egg yolk; 3. Improve anti-stress ability and reduce mortality; 4. Improve feed conversion and increase growth rate. |
| Aquatic animals | January 300 | 45 | 1. Promote growth, improve feed conversion; 2. Improve anti-stress abolity, reduce morbidity and mortality. |
| Ruminant animal g/head day | 2.4 | 1. Improve milk yield, prevent mastitis and foof rot, and reduce somatic cell content in milk; 2. Promote growth, improve feed conversion and improve meat quality. |
4. Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
- Product Name: Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
- Appearance: brownish-yellow granules
- Physicochemical parameters
a) Mn: ≥ 10.0%
b) Total amino acids: ≥ 19.5%
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
n=0, 1,2,...indicates chelated manganese for dipeptides, tripeptides, and tetrapeptides
Characteristics of Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
This product is an all-organic trace mineral chelated by a special chelating proces with pure plant enzymatic small molecule peptides as chelating substrates and trace elements;
This product is chemically stable and can significantly reduce its damage to vitamins and fats, etc. The use of this product is conducive to improving feed quality;
The product is absorbed through small peptide and amino acid pathways, reducing the competition and antagonism with other trace elements, and has the best bio-absorption and utilization rate;
The product can improve the growth rate, improve feed conversion and health status significantly; and improve the laying rate, hatching rate and healthy chick rate of breeding poultry obviously;
Manganese is necessary for bone growth and connective tissue maintenance. It is closely related to many enzymes; and participates in carbohydrate, fat and protein metabolism, reproduction and immune response.
Usage and Efficacy of Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
| Application object | Suggested dosage (g/t full-value material) | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| Breeding pig | 200～300 | 30～45 | 1. Promote the normal development of sexual organs and improve sperm motility; 2. Improve the reproductive capacity of breeding pigs and reduce reproductive obstacles. |
| Piglets and fattening pigs | 100～250 | 15～37.5 | 1. It is beneficial to improve immune functions, and improve anti-stress ability and disease resistance; 2. Promote growth and improve feed conversion significantly; 3. Improve meat color and quality, and improve lean meat percentage. |
| Bird | 250～350 | 37.5～52.5 | 1. Improve anti-stress ability and reduce mortality; 2. Improve laying rate, fertilization rate and hatching rate of breeding eggs, improve eggshell quality and reduce shell breaking rate; 3. Promote bone growth and reduce the incidence of leg diseases. |
| Aquatic animals | 100～200 | 15～30 | 1. Promote growth and improve its anti-stress ability and disease resistance; 2. Improve sperm motility and hatching rate of fertilized eggs. |
| Ruminant animal g/head day | Cattle 1.25 | 1. Prevent fatty acid synthesis disorder and bone tissue damage; 2. Improve reproductive capacity, prevent abortion and postpartum paralysis of female animals, reduce the mortality of calves and lambs, and increase the newborn weight of young animals. | |
| Goat 0.25 |
Part 6 FAB of Small Peptide-mineral Chelates
| S/N | F: Functional attributes | A: Competitive differences | B: Benefits brought by competitive differences to users |
| 1.52 | Selectivity control of raw materials | Select pure plant enzymatic hydrolysis of small peptides | High biological safety, avoiding cannibalism |
| 2 | Directional digestion technology for double protein biological enzyme | High proportion of small molecular peptides | More "targets", which are not easy to saturation, with high biological activity and better stability |
| 3 | Advanced pressure spray & drying technology | Granular product, with uniform particle size, better fluidity, not easy to absorb moisture | Ensure easy to use, more uniform mixing in complete feed |
| Low water content (≤ 5%), which greatly reduces the influence caused by vitamins and enzyme preparations | Improve the stability of feed products | ||
| 4 | Advanced production control technology | Totally enclosed process, high degree of automatic control | Safe and stable quality |
| 5 | Advanced quality control technology | Establish and improve scientific and advanced analytical methods and control means for detecting factors affecting product quality, such as acid-soluble protein, molecular weight distribution, amino acids and chelating rate | Ensure quality, ensure efficiency and improve efficiency |
Part 7 Competitor Comparison
Standard VS Standard
Comparison of peptide distribution and chelation rate of products
| Sustar's products | Proportion of small peptides（180-500） | Zinpro's products | Proportion of small peptides（180-500） |
| AA-Cu | ≥74% | AVAILA-Cu | 78% |
| AA-Fe | ≥48% | AVAILA-Fe | 59% |
| AA-Mn | ≥33% | AVAILA-Mn | 53% |
| AA-Zn | ≥37% | AVAILA-Zn | 56% |
| Sustar's products | Chelation rate | Zinpro's products | Chelation rate |
| AA-Cu | 94.8% | AVAILA-Cu | 94.8% |
| AA-Fe | 95.3% | AVAILA-Fe | 93.5% |
| AA-Mn | 94.6% | AVAILA-Mn | 94.6% |
| AA-Zn | 97.7% | AVAILA-Zn | 90.6% |
The ratio of small peptides of Sustar is slightly lower than that of Zinpro, and the chelation rate of Sustar's products is slightly higher than that of Zinpro's products.
Comparison of the content of 17 amino acids in different products
| Name of amino acids | Sustar's Copper Amino Acid Chelate Feed Grade | Zinpro's AVAILA copper | Sustar's Ferrous Amino Acid C helate Feed Grade | Zinpro's AVAILA iron | Sustar's Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade | Zinpro's AVAILA manganese | Sustar's Zinc Amino Acid Chelate Feed Grade | Zinpro's AVAILA zinc |
| aspartic acid (%) | 1.88 | 0.72 | 1.50 | 0.56 | 1.78 | 1.47 | 1.80 | 2.09 |
| glutamic acid (%) | 4.08 | 6.03 | 4.23 | 5.52 | 4.22 | 5.01 | 4.35 | 3.19 |
| Serine (%) | 0.86 | 0.41 | 1.08 | 0.19 | 1.05 | 0.91 | 1.03 | 2.81 |
| Histidine (%) | 0.56 | 0.00 | 0.68 | 0.13 | 0.64 | 0.42 | 0.61 | 0.00 |
| Glycine (%) | 1.96 | 4.07 | 1.34 | 2.49 | 1.21 | 0.55 | 1.32 | 2.69 |
| Threonine (%) | 0.81 | 0.00 | 1.16 | 0.00 | 0.88 | 0.59 | 1.24 | 1.11 |
| Arginine (%) | 1.05 | 0.78 | 1.05 | 0.29 | 1.43 | 0.54 | 1.20 | 1.89 |
| Alanine (%) | 2.85 | 1.52 | 2.33 | 0.93 | 2.40 | 1.74 | 2.42 | 1.68 |
| Tyrosinase (%) | 0.45 | 0.29 | 0.47 | 0.28 | 0.58 | 0.65 | 0.60 | 0.66 |
| Cystinol (%) | 0.00 | 0.00 | 0.09 | 0.00 | 0.11 | 0.00 | 0.09 | 0.00 |
| Valine (%) | 1.45 | 1.14 | 1.31 | 0.42 | 1.20 | 1.03 | 1.32 | 2.62 |
| Methionine (%) | 0.35 | 0.27 | 0.72 | 0.65 | 0.67 | 0.43 | January 0.75 | 0.44 |
| Phenylalanine (%) | 0.79 | 0.41 | 0.82 | 0.56 | 0.70 | 1.22 | 0.86 | 1.37 |
| Isoleucine (%) | 0.87 | 0.55 | 0.83 | 0.33 | 0.86 | 0.83 | 0.87 | 1.32 |
| Leucine (%) | 2.16 | 0.90 | 2.00 | 1.43 | 1.84 | 3.29 | 2.19 | 2.20 |
| Lysine (%) | 0.67 | 2.67 | 0.62 | 1.65 | 0.81 | 0.29 | 0.79 | 0.62 |
| Proline (%) | 2.43 | 1.65 | 1.98 | 0.73 | 1.88 | 1.81 | 2.43 | 2.78 |
| Total amino acids (%) | 23.2 | 21.4 | 22.2 | 16.1 | 22.3 | 20.8 | 23.9 | 27.5 |
Overall, the proportion of amino acids in Sustar's products is higher than that in Zinpro's products.
Part 8 Effects of use
Effects of different sources of trace minerals on the production performance and egg quality of laying hens in the late laying period
Production Process
- Targeted chelation technology
- Shear emulsification technology
- Pressure spray & drying technology
- Refrigeration & dehumidification technology
- Advanced environmental control technology
Appendix A: Methods for the Determination of relative molecular mass distribution of peptides
Adoption of standard: GB/T 22492-2008
1 Test Principle:
It was determined by high performance gel filtration chromatography. That is to say, using porous filler as stationary phase, based on the difference in the relative molecular mass size of the sample components for separation, detected at the peptide bond of the ultraviolet absorption wavelength of 220nm, using the dedicated data processing software for the determination of relative molecular mass distribution by gel filtration chromatography (i.e., the GPC software), the chromatograms and their data were processed, calculated to get the size of the relative molecular mass of the soybean peptide and the distribution range.
2. Reagents
The experimental water should meet the specification of secondary water in GB/T6682, the use of reagents, except for special provisions, are analytically pure.
2.1 Reagents include acetonitrile (chromatographically pure), trifluoroacetic acid (chromatographically pure),
2.2 Standard substances used in the calibration curve of relative molecular mass distribution: insulin, mycopeptides, glycine-glycine-tyrosine-arginine, glycine-glycine-glycine
3 Instrument and equipment
3.1 High Performance Liquid Chromatograph (HPLC): a chromatographic workstation or integrator with a UV detector and GPC data processing software.
3.2 Mobile phase vacuum filtration and degassing unit.
3.3 Electronic balance: graduated value 0.000 1g.
4 Operating steps
4.1 Chromatographic conditions and system adaptation experiments (reference conditions)
4.1.1 Chromatographic column: TSKgelG2000swxl300 mm×7.8 mm (inner diameter) or other gel columns of the same type with similar performance suitable for the determination of proteins and peptides.
4.1.2 Mobile phase: Acetonitrile + water + trifluoroacetic acid = 20 + 80 + 0.1.
4.1.3 Detection wavelength: 220 nm.
4.1.4 Flow rate: 0.5 mL/min.
4.1.5 Detection time: 30 min.
4.1.6 Sample injection volume: 20μL.
4.1.7 Column temperature: room temperature.
4.1.8 In order to make the chromatographic system meet the detection requirements, it was stipulated that under the above chromatographic conditions, the gel chromatographic column efficiency, i.e., the theoretical number of plates (N), was not less than 10000 calculated on the basis of the peaks of the tripeptide standard (Glycine-Glycine-Glycine).
4.2 Production of relative molecular mass standard curves
The above different relative molecular mass peptide standard solutions with a mass concentration of 1 mg / mL were prepared by mobile phase matching, mixed in a certain proportion, and then filtered through an organic phase membrane with the pore size of 0.2 μm~0.5 μm and injected into the sample, and then the chromatograms of the standards were obtained. Relative molecular mass calibration curves and their equations were obtained by plotting the logarithm of relative molecular mass against retention time or by linear regression.
4.3 Sample treatment
Accurately weigh 10mg of sample in a 10mL volumetric flask, add a little mobile phase, ultrasonic shaking for 10min, so that the sample is fully dissolved and mixed, diluted with mobile phase to the scale, and then filtered through an organic phase membrane with a pore size of 0.2μm~0.5μm, and the filtrate was analyzed according to the chromatographic conditions in A.4.1.
5. Calculation of relative molecular mass distribution
After analyzing the sample solution prepared in 4.3 under the chromatographic conditions of 4.1, the relative molecular mass of the sample and its distribution range can be obtained by substituting the chromatographic data of the sample into the calibration curve 4.2 with GPC data processing software. The distribution of the relative molecular masses of the different peptides can be calculated by the peak area normalization method, according to the formula: X=A/A total×100
In the formula: X - The mass fraction of a relative molecular mass peptide in the total peptide in the sample, %;
A - Peak area of a relative molecular mass peptide;
Total A - the sum of the peak areas of each relative molecular mass peptide, calculated to one decimal place.
6 Repeatability
The absolute difference between two independent determinations obtained under conditions of repeatability shall not exceed 15% of the arithmetic mean of the two determinations.
Appendix B: Methods for the Determination of Free Amino Acids
Adoption of standard: Q/320205 KAVN05-2016
1.2 Reagents and materials
Glacial acetic acid: analytically pure
Perchloric acid: 0.0500 mol/L
Indicator: 0.1% crystal violet indicator (glacial acetic acid)
2. Determination of free amino acids
The samples were dried at 80°C for 1 hour.
Place the sample in a dry container to cool naturally to room temperature or cool down to a usable temperature.
Weigh approximately 0.1 g of sample (accurate to 0.001 g) into a 250 mL dry conical flask.
Quickly proceed to the next step to avoid the sample from absorbing ambient moisture
Add 25 mL of glacial acetic acid and mix well for no more than 5 min.
Add 2 drops of crystal violet indicator
Titrate with 0.0500 mol / L (±0.001) standard titration solution of perchloric acid until the solution changes from purple to the end point.
Record the volume of standard solution consumed.
Carry out the blank test at the same time.
3. Calculation and results
The free amino acid content X in the reagent is expressed as a mass fraction (%) and is calculated according to the formula: X = C × (V1-V0) × 0.1445/M × 100%, in tne formula:
C - Concentration of standard perchloric acid solution in moles per liter (mol/L)
V1 - Volume used for titration of samples with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL).
Vo - Volume used for titration blank with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL);
M - Mass of the sample, in grams (g ).
0.1445: Average mass of amino acids equivalent to 1.00 mL of standard perchloric acid solution [c (HClO4) = 1.000 mol / L].
Appendix C: Methods for the Determination of Sustar's chelation rate
Adoption of standards: Q/70920556 71-2024
1. Determination principle (Fe as an example)
Amino acid iron complexes have very low solubility in anhydrous ethanol and free metal ions are soluble in anhydrous ethanol, the difference in solubility between the two in anhydrous ethanol was utilized to determine the chelation rate of amino acid iron complexes.
2. Reagents & Solutions
Anhydrous ethanol; the rest is the same as clause 4.5.2 in GB/T 27983-2011.
3. Steps of analysis
Do two trials in parallel. Weigh 0.1g of the sample dried at 103±2℃ for 1 hour, accurate to 0.0001g, add 100mL of anhydrous ethanol to dissolve, filter, filter residue washed with 100mL of anhydrous ethanol for at least three times, then transfer the residue into a 250mL conical flask, add 10mL of sulfuric acid solution according to clause 4.5.3 in GB/T27983-2011, and then perform the following steps according to clause 4.5.3 “Heat to dissolve and then let cool” in GB/T27983-2011. Carry out the blank test at the same time.
4. Determination of total iron content
4.1 The principle of determination is the same as clause 4.4.1 in GB/T 21996-2008.
4.2. Reagents & Solutions
4.2.1 Mixed acid: Add 150mL of sulfuric acid and 150mL of phosphoric acid to 700mL of water and mix well.
4.2.2 Sodium diphenylamine sulfonate indicator solution: 5g/L, prepared according to GB/T603.
4.2.3 Cerium sulfate standard titration solution: concentration c [Ce (SO4) 2] = 0.1 mol/L, prepared according to GB/T601.
4.3 Steps of analysis
Do two trials in parallel. Weigh 0.1g of sample, accurate to 020001g, place in a 250mL conical flask, add 10mL of mixed acid, after dissolution, add 30ml of water and 4 drops of sodium dianiline sulfonate indicator solution, and then perform the following steps according to clause 4.4.2 in GB/T21996-2008. Carry out the blank test at the same time.
4.4 Representation of results
The total iron content X1 of the amino acid iron complexes in terms of mass fraction of iron, the value expressed in %, was calculated according to formula (1):
X1=(V-V0)×C×M×10-3×100
In the formula: V - volume of cerium sulfate standard solution consumed for titration of test solution, mL;
V0 - cerium sulfate standard solution consumed for titration of blank solution, mL;
C - Actual concentration of cerium sulfate standard solution, mol/L
5. Calculation of iron content in chelates
The iron content X2 in the chelate in terms of the mass fraction of iron, the value expressed in %, was calculated according to the formula: x2 = ((V1-V2) × C × 0.05585)/m1 × 100
In the formula: V1 - volume of cerium sulfate standard solution consumed for titration of test solution, mL;
V2 - cerium sulfate standard solution consumed for titration of blank solution, mL;
C - Actual concentration of cerium sulfate standard solution, mol/L;
0.05585 - mass of ferrous iron expressed in grams equivalent to 1.00 mL of cerium sulfate standard solution C[Ce(SO4)2.4H20] = 1.000 mol/L.
m1-Mass of the sample, g. Take the arithmetic mean of the parallel determination results as the determination results, and the absolute difference of the parallel determination results is not more than 0.3%.
6. Calculation of chelation rate
Chelation rate X3, the value expressed in %, X3 = X2/X1 × 100
Appendix C: Methods for the Determination of Zinpro's chelation rate
Adoption of standard: Q/320205 KAVNO7-2016
1. Reagents and materials
a) Glacial acetic acid: analytically pure; b) Perchloric acid: 0.0500mol/L; c) Indicator: 0.1% crystal violet indicator (glacial acetic acid)
2. Determination of free amino acids
2.1 The samples were dried at 80°C for 1 hour.
2.2 Place the sample in a dry container to cool naturally to room temperature or cool down to a usable temperature.
2.3 Weigh approximately 0.1 g of sample (accurate to 0.001 g) into a 250 mL dry conical flask
2.4 Quickly proceed to the next step to avoid the sample from absorbing ambient moisture.
2.5 Add 25mL of glacial acetic acid and mix well for no more than 5min.
2.6 Add 2 drops of crystal violet indicator.
2.7 Titrate with 0.0500mol/L (±0.001) standard titration solution of perchloric acid until the solution changes from purple to green for 15s without changing color as the end point.
2.8 Record the volume of standard solution consumed.
2.9 Carry out the blank test at the same time.
3. Calculation and results
The free amino acid content X in the reagent is expressed as a mass fraction (%), calculated according to formula (1): X=C×(V1-V0) ×0.1445/M×100%...... .......(1)
In the formula: C - concentration of standard perchloric acid solution in moles per liter (mol/L)
V1 - Volume used for titration of samples with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL).
Vo - Volume used for titration blank with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL);
M - Mass of the sample, in grams (g ).
0.1445 - Average mass of amino acids equivalent to 1.00 mL of standard perchloric acid solution [c (HClO4) = 1.000 mol / L].
4. Calculation of chelation rate
The chelation rate of the sample is expressed as mass fraction (%), calculated according to formula (2): chelation rate = (total amino acid content - free amino acid content)/total amino acid content×100%.
Post time: Sep-17-2025
